Forschungsprofil

BiomaterialienFibroseGradierte ImplantateImmunreaktionenMesenchymale StammzellenMuskuloskelettale ErkrankungenRegenerative MedizinSehnen-Knochen-ÜbergängeSignaltransduktionTranslationale Implantatforschung

Wir untersuchen die biologischen Grundlagen für innovative Implantate und regenerative Therapien des muskuloskelettalen Systems. Im Mittelpunkt stehen die Entwicklung gradierter Implantate für komplexe Gewebeübergänge, insbesondere an Sehnen-Knochen-Verbindungen, sowie die Erforschung mesenchymaler Stammzellen und ihrer Signalnetzwerke. Ziel ist es, grundlegende molekulare Mechanismen der Regeneration und Entzündung in klinisch relevante Anwendungen zu überführen.

Ein weiterer Schwerpunkt liegt auf der Wechselwirkung zwischen Biomaterialien und dem Immunsystem. Dabei werden Fremdkörperreaktionen, Fibrose und immunmodulatorische Prozesse untersucht, um Implantate mit verbesserter Biokompatibilität zu entwickeln. Ergänzend erforscht die Arbeitsgruppe Veränderungen mesenchymaler Stammzellen bei Knochensarkomen und entwickelt neue Strategien zur Zellisolierung und Kultivierung. Die Forschung erfolgt interdisziplinär in enger Zusammenarbeit mit Partnern aus Medizin, Ingenieurwissenschaften und Materialwissenschaften und verfolgt eine konsequente Translation in zukünftige klinische Anwendungen.

Die von unserer Arbeitsgruppe programmierte Software is frei bei Github verfügbar.

Gruppenleitung und Kontakt

  • Prof. Andrea Hoffmann
  • 0000-0000-0000-0000

  • Medizinische Hochschule Hannover
    Klinik für Orthopädie
    Carl-Neuberg-Str. 1
    30625 Hannover

  • +49 511 532-1442
  • Hoffmann.Andrea@mh-hannover.de

Stellvertretende Gruppenleitung

  • Prof. Stanislav Stellvertreter

Projekte und Forschungsarbeiten

  • Ambulante Entnahme von Stammzellen

    Mesenchymale Stammzellen und Signalwege der Regeneration

    Wir untersuchen die biologischen Eigenschaften humaner mesenchymaler Stammzellen als zentrale Zellpopulation der regenerativen Medizin. Besonderes Augenmerk liegt auf Signalwegen, welche Differenzierung, Immunmodulation und Geweberegeneration steuern.

    Hierfür werden neue Isolierungs- und Kultivierungsverfahren entwickelt und molekulare Netzwerke analysiert. Ein Schwerpunkt bildet die Regulation der Sehnenentwicklung durch spezifische Signalwege, die bereits erfolgreich in experimentellen Modellen der Sehnenregeneration eingesetzt werden konnten. Die gewonnenen Erkenntnisse bilden die Grundlage zukünftiger zellbasierter Therapien.

    Illustration eines Biofilms
    Zahnimplantat mit Titangewinde vor dem Einsetzen
    Außenaufnahme des NIFE in Hannover

  • Eines der 14 Forschungslabore im NIFE

    Mesenchymale Stammzellen bei Knochensarkomen

    Wir analysieren Veränderungen mesenchymaler Stammzellen bei Patientinnen und Patienten mit Knochensarkomen. Mittels RNA-Profilierung werden krankheitsspezifische molekulare Veränderungen identifiziert und funktionell untersucht.

    Langfristiges Ziel ist es, neue Biomarker sowie therapeutische Angriffspunkte für Sarkomerkrankungen zu identifizieren und gleichzeitig das Verständnis der Tumor-Stroma-Interaktion zu verbessern.

Publikationen

Ausgewählte Veröffentlichungen
dieser Forschungsgruppe

  1. Friese N, Gierschner MB, Schadzek P, Roger Y, Hoffmann A. Regeneration of Damaged Tendon-Bone Junctions (Entheses): TAK1 as a Potential Node Factor. International Journal of Molecular Sciences (2020). DOI: 10.3390/ijms21145177
  2. Lavrentieva A, Hoffmann A, Lee-Thedieck C. Limited Potential or Unfavorable Manipulations? Strategies Toward Efficient Mesenchymal Stem/Stromal Cell Applications. Frontiers in Cell and Developmental Biology (2020). DOI: 10.3389/fcell.2020.00316
  3. Roger Y, Sydow S, Burmeister L et al. Sustained Release of TGF-β3 from Polysaccharide Nanoparticles Induces Chondrogenic Differentiation of Human Mesenchymal Stromal Cells. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces (2020). DOI: 10.1016/j.colsurfb.2020.110843
  4. Roger Y, Burmeister L, Hamm A et al. Heparin Anticoagulant for Human Bone Marrow Does Not Influence In Vitro Performance of Human Mesenchymal Stromal Cells. Cells (2020). DOI: 10.3390/cells9071580
  5. Friese N, Gierschner MB, Schadzek P, Roger Y, Hoffmann A. Regeneration of Damaged Tendon-Bone Junctions (Entheses): TAK1 as a Potential Node Factor. International Journal of Molecular Sciences (2020). DOI: 10.3390/ijms21145177
  6. Lavrentieva A, Hoffmann A, Lee-Thedieck C. Limited Potential or Unfavorable Manipulations? Strategies Toward Efficient Mesenchymal Stem/Stromal Cell Applications. Frontiers in Cell and Developmental Biology (2020). DOI: 10.3389/fcell.2020.00316
  7. Roger Y, Sydow S, Burmeister L et al. Sustained Release of TGF-β3 from Polysaccharide Nanoparticles Induces Chondrogenic Differentiation of Human Mesenchymal Stromal Cells. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces (2020). DOI: 10.1016/j.colsurfb.2020.110843
  8. Roger Y, Burmeister L, Hamm A et al. Heparin Anticoagulant for Human Bone Marrow Does Not Influence In Vitro Performance of Human Mesenchymal Stromal Cells. Cells (2020). DOI: 10.3390/cells9071580
  9. Friese N, Gierschner MB, Schadzek P, Roger Y, Hoffmann A. Regeneration of Damaged Tendon-Bone Junctions (Entheses): TAK1 as a Potential Node Factor. International Journal of Molecular Sciences (2020). DOI: 10.3390/ijms21145177
  10. Lavrentieva A, Hoffmann A, Lee-Thedieck C. Limited Potential or Unfavorable Manipulations? Strategies Toward Efficient Mesenchymal Stem/Stromal Cell Applications. Frontiers in Cell and Developmental Biology (2020). DOI: 10.3389/fcell.2020.00316